土壤脲酶(Solid-Urease,S-UE)测定试剂盒说明书
微量法100管/48样
注 意 :正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
S-UE能够水解尿素,产生氨和碳酸。土壤脲酶活性与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效氮含量呈正相关。土壤脲酶活性反应了土壤的氮素状况。
测定原理:
利用靛酚蓝比色法测定脲酶水解尿素产生的NH3-N。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、甲苯(不允许快递)和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
试剂一:甲苯2mL×1瓶,4℃保存;(自备)
试剂二:粉剂×1瓶,临用前加入9mL蒸馏水,充分溶解待用,4℃保存;用不完的试剂4℃保存;
试剂三:液体22mL×1瓶,4℃保存;
试剂四A液:液体×1支,4℃保存;试剂四B液:液体×1瓶,4℃保存;临用前将A液倒入B液中混合,待用;用不完的试剂4℃保存一周;
试剂五:液体2mL×1瓶,4℃保存;
样品处理:
新鲜土样自然风干或37度烘箱风干,过30~50目筛。
测定步骤:
1 、培养
测定管 | 对照管 | |
风干土样(g) | 0.05 | 0.05 |
试剂一(μL) | 20 | 20 |
振荡混匀,室温放置15min
试剂二(μL) | 90 | |
蒸馏水(μL) | 90 | |
试剂三(μL) | 190 | 190 |
混匀,放入37℃水浴培养24h后,10000g 25℃离心10min,取上清液。
2、将培养结束的上清液稀释10倍(取0.1mL上清液,加入0.9mL蒸馏水)。
3、测氨量(在微量石英比色皿或96孔板中加入下列试剂)
测定管 | 对照管 | |
稀释后的上清液(μL) | 80 | 80 |
试剂四(μL) | 15 | 15 |
试剂五(μL) | 15 | 15 |
充分混匀,室温放置20min
蒸馏水(μL) | 90 | 90 |
混匀,于578nm处,蒸馏水调零,读吸光值A,计算ΔA=A测定管-A对照管。每个测定管设一个对照管。
脲酶活力计算:
a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下
标准条件下测定的回归方程为y = 0.0915x +0.0373;x为标准品浓度(μg/mL),y为吸光值A。
单位的定义:每天每g土样中产生1μg NH3-N定义为一个酶活力单位。
脲酶活力(μg/d/g 土样)=(ΔA-0.0373) ÷0.0915×10×V反总÷W÷T =656×(ΔA -0.0373)
10:稀释倍数;T:反应时间,1d; V反总:反应体系总体积:0.3mL;W:样本质量,0.05g。
b.用96孔板测定的计算公式如下
标准条件下测定的回归方程为y = 0.04575x +0.0373;x为标准品浓度(μg/mL),y为吸光值A。
单位的定义:每天每g土样中产生1μg NH3-N定义为一个酶活力单位。
脲酶活力(μg/d /g 土样)=(ΔA-0.0373) ÷0.04575×10×V反总÷W÷T =1312×(ΔA -0.0373)
10:稀释倍数;T:反应时间,1d; V反总:反应体系总体积:0.3mL;W:样本质量,0.05g。
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